反芻動(dòng)物瘤胃微生物對(duì)飼料消化能力起決定性作用,介于對(duì)宿主的營(yíng)養(yǎng)素供應(yīng)影響其泌乳性能和飼料效率。牛月形單胞菌(Selenomonas bovis)作為高飼料轉(zhuǎn)化效率奶牛瘤胃中的基石微生物,可主導(dǎo)更高效的碳水化合物底物利用與代謝功能活性,是高效奶牛瘤胃菌群和功能調(diào)控的重要靶點(diǎn)微生物。牛月形單胞菌是月形單胞菌屬的一種,是參與瘤胃發(fā)酵的重要細(xì)菌。其對(duì)反芻動(dòng)物的生糖以及丙酸的生成起重要作用。利用多種宏組學(xué)聯(lián)用技術(shù)系統(tǒng)研究,揭示了不同互作機(jī)制下的瘤胃微生態(tài)對(duì)奶牛飼料轉(zhuǎn)化效率的影響;發(fā)現(xiàn)在高效動(dòng)物瘤胃中,牛月形單胞菌的豐度上調(diào)4倍,并主導(dǎo)了幾個(gè)產(chǎn)琥珀酸細(xì)菌的正向互作。此外,遺傳學(xué)特性分析發(fā)現(xiàn)牛月形單胞菌為具有中等遺傳力(遺傳力為0.31)的可遺傳瘤胃細(xì)菌,因其穩(wěn)定的代際遺傳特性而具有重要調(diào)控潛力,提示靶向調(diào)控瘤胃微生物牛月形單胞菌的豐度和功能可為精準(zhǔn)調(diào)控反芻動(dòng)物飼料轉(zhuǎn)化效率提供新的可能。因此,分離篩選瘤胃丙酸生成菌-牛月形單胞菌對(duì)研究反芻動(dòng)物瘤胃微生物丙酸代謝和調(diào)控提供理論基礎(chǔ),對(duì)牛月形單胞菌進(jìn)行體外分離培養(yǎng)具有重要科學(xué)和生產(chǎn)意義。


下面提供一種牛月形單胞菌分離培養(yǎng)方法,成功從奶牛瘤胃液中分離出牛月形單胞菌,該牛月形單胞菌可調(diào)節(jié)碳水化合物的趨化性,是高效奶牛瘤胃菌群和功能調(diào)控的重要靶點(diǎn)微生物。


一種牛月形單胞菌分離培養(yǎng)方法,包括以下步驟:


步驟1、基于瘤胃插管技術(shù)進(jìn)行瘤胃液采集:采樣當(dāng)天于晨飼前(04:00-06:00)采用口腔插管法采集奶牛瘤胃內(nèi)容物,采集的瘤胃內(nèi)容物用4層濾網(wǎng)(180目)進(jìn)行過濾得到瘤胃液,然后將瘤胃液裝入螺旋離心管中,并迅速向其中通入CO2;


步驟2、培養(yǎng)前的材料制備與準(zhǔn)備工作:材料準(zhǔn)備包括專性厭氧桿菌營(yíng)養(yǎng)液、LB固體培養(yǎng)基、LB液體培養(yǎng)基、PYG培養(yǎng)基、維生素K1、血紅素、馬血清、二柳蘇糖醇(DTT)、基本培養(yǎng)基MM、PMD18-T載體、感受態(tài)細(xì)胞、細(xì)菌基因組DNA小量制備試劑盒、PCR產(chǎn)物回收試劑盒、日常型質(zhì)粒DNA小劑量純化試劑盒、PCR擴(kuò)增用材料:包括生化反應(yīng)管(31種)、Taq DNA聚合酶、dNTPs Mix-ture、5mg/ml EB、rTaq DNA聚合酶(5U/μL)、DNAMarker DL 2000、DNAMarker DL15000、dNTPs(2.5mmol/L)、Biospin膠回收試劑盒;


步驟3、牛月形單胞菌的分離;


將瘤胃液于37℃迅速送回實(shí)驗(yàn)室在600r/min下離心10min,以去除瘤胃液中的飼料顆粒及纖毛蟲等微生物,取上清液,用生理鹽水梯度稀釋,然后各取50μL不同梯度的稀釋液用L棒均勻涂布于固體培養(yǎng)基中,在厭氧工作站或用厭氧培養(yǎng)袋在39℃條件下培養(yǎng)48h,取單個(gè)40μL菌落在新鮮LB固體培養(yǎng)基上劃線,純培養(yǎng),并進(jìn)行專性厭氧桿菌營(yíng)養(yǎng)液的液體培養(yǎng),在厭氧工作站中在37℃下恒溫培養(yǎng)48h,再進(jìn)行革蘭氏染色鏡檢;


稱取PYG培養(yǎng)基基礎(chǔ)18.04g,加熱溶解于500mL蒸餾水中,121℃高壓滅菌15min后,冷卻至50℃,加入過濾除菌的維生素K1溶液0.5mL、血紅素溶液(5mg/mL)2.5mL,以及25mL滅菌瘤胃液、25mL馬血清和0.1gDTT,使用8M NaOH將pH值調(diào)整至7.2,混勻備用;菌株保藏,將單個(gè)菌落接種于新鮮的液體全營(yíng)養(yǎng)培養(yǎng)基,在厭氧培養(yǎng)箱(85%氮?dú)狻?0%二氧化碳和5%氫氣)中過夜,然后取菌液加入到滅菌甘油(濃度15%-20%)中,使用厭氧培養(yǎng)箱于37℃條件下培養(yǎng)48h,接著無菌條件下加入2mL細(xì)菌懸液至營(yíng)養(yǎng)肉湯中,將細(xì)菌和肉湯混勻使細(xì)菌最終濃度為108-109cell/mL;基于凍干法在無菌條件下將細(xì)菌分裝到有滅菌玻璃珠的冷凍管中,反復(fù)吹打,使珠子內(nèi)部的氣泡完全被細(xì)菌懸液替代,吸去冷凍管內(nèi)多余的液體,將混有細(xì)菌和珠子的冷凍管放入-80℃冰箱保存。


步驟4、利用常規(guī)細(xì)菌接種法進(jìn)行生化試驗(yàn):將活化至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)中期的菌株以2%(v/v)的接種量接種于基本培養(yǎng)基MM中,分別以0.5%多糖(淀粉、葡聚糖、木聚糖、甘露聚糖、菊粉、地衣多糖、木葡聚糖)、0.5%二糖(纖維二糖、木二糖、甘露二糖)或0.5%單糖(葡萄糖、果糖、甘露糖、鼠李糖、半乳糖)作為唯一碳源底物,置于厭氧培養(yǎng)箱中于37℃條件下培養(yǎng);利用Bioscreen全自動(dòng)微生物生長(zhǎng)曲線測(cè)定儀連續(xù)測(cè)定80h,且每4h進(jìn)行一次OD600值測(cè)定,繪制可代謝碳源底物譜和生長(zhǎng)曲線,試驗(yàn)重復(fù)3次;生長(zhǎng)曲線如圖1所示,從圖中可以看出,以淀粉、木聚糖、纖維二糖、葡萄糖、果糖或半乳糖作為可代謝底物時(shí)有利于菌株生長(zhǎng)。

毛細(xì)管趨化試驗(yàn)具體步驟為:


挑取單菌落培養(yǎng)至OD600為0.1-0.2,將菌株使用趨化緩沖液(50mM磷酸鉀緩沖液添加到20μM EDTA、0.05%甘油中,pH7.0)洗滌2次,在1200g下低速離心3min后,用相同緩沖液稀釋至OD600為0.05,然后將細(xì)菌懸液分裝于96孔板;使用趨化緩沖液配制不同濃度的效應(yīng)物分子-可代謝碳源底物,將毛細(xì)管一端熱封,填充趨化緩沖液以及加入碳源底物效應(yīng)物的趨化緩沖液,毛細(xì)管開放段浸于細(xì)菌懸液中,趨化30min后,將毛細(xì)管從細(xì)菌懸液取出,用ddH2O沖洗表面,內(nèi)容物全部吹打并涂布于LB瓊脂平板,37℃條件下厭氧培養(yǎng)24h,記錄菌落形成單位(CFU),減去空白趨化緩沖液的毛細(xì)管細(xì)菌數(shù)進(jìn)行校正,得到趨化細(xì)菌數(shù)目,并計(jì)算趨化性指數(shù)。

結(jié)果如圖2所示,以淀粉、木聚糖、纖維二糖、葡萄糖、果糖或半乳糖作為可代謝底物時(shí),趨化性指數(shù)均大于1,說明牛月形單胞菌對(duì)淀粉、木聚糖、纖維二糖、葡萄糖、果糖或半乳糖可代謝底物產(chǎn)生正向趨化。


軟瓊脂平板趨化試驗(yàn)具體步驟為:


將培養(yǎng)至對(duì)數(shù)期的菌液(OD600為0.5-0.7),使用趨化緩沖液洗滌3次,在1200g下低速離心3min后,將10μL濃度為100μM的碳源底物效應(yīng)物點(diǎn)板于含0.25%(w/v)瓊脂的固體MSB中,4℃過夜;在趨化平板中央效應(yīng)物原點(diǎn)兩側(cè)等距離接種菌液1μL,共接種2個(gè)點(diǎn),然后將趨化平板在30℃下培養(yǎng)20-30h后拍照。

結(jié)果如圖3所示,以淀粉、木聚糖、纖維二糖、葡萄糖、果糖或半乳糖作為可代謝底物時(shí)形成了明顯的趨化圈,說明牛月形單胞菌可調(diào)節(jié)碳水化合物的趨化性。


步驟5、菌株16S rDNA基因序列鑒定:用細(xì)菌基因組DNA小量制備試劑盒提取牛月形單胞菌DNA并以其為擴(kuò)增模板,退火溫度為50℃,35個(gè)循環(huán),進(jìn)行PCR擴(kuò)增,電泳觀察結(jié)果;用PCR產(chǎn)物回收試劑盒回收特異DNA片段的PCR產(chǎn)物,將其連接在PMD18-T載體上,16℃連接過夜;將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化入大腸桿菌DN5α株感受態(tài)細(xì)胞中,搖菌1h后將菌液涂在Amp+的LB瓊脂平板上37℃恒溫振蕩培養(yǎng)12-16h;用日常型質(zhì)粒DNA小劑量純化試劑盒提取重組質(zhì)粒,電泳觀察提取結(jié)果;PCR擴(kuò)增重組質(zhì)粒,電泳觀察并送TaKaPa公司對(duì)其測(cè)定序列,由DNAsis軟件分析測(cè)序結(jié)果;設(shè)計(jì)細(xì)菌16S rRNA基因片段PCR擴(kuò)增通用引物,上游引物序列為:5′AGAGTTTGATC(A/C)TGG3′,下游引物序列為:5′GGACTAC(A/T/C)AGGGTATCTAAT 3′,引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成;提取分離菌株的基因組DNA擴(kuò)增其16SrDNA基因片段與GenBank中發(fā)表的牛月形單胞菌16S rRNA進(jìn)行基因序列同源性分析,同源性為97%,確定分離菌株為牛月形單胞菌。


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